|
|
<section data-tools="gulangu" data-label="powered by gulangu"></section><p>来源：迈瑞客户服务中心<br /></p><p><br /></p><p><strong><span>案例</span></strong></p><p><span>某三甲医院，女，75岁，肾肿瘤，血常规结果如下：</span></p><p><br /></p><p><p><img src="image/20200927/705d61daaf4eee696f02f4191fd2cfe8_1.jpg" /></p></p><p><br /></p><p><span>可见该患者WBC: 1.75×10</span><sup>9</sup><span>/L, RBC: 0.18×10</span><sup>12</sup><span>/L,<span> </span></span><span>HGB: 108g/L, MCH: 597.2 pg, MCHC: 5050g/L</span><span>同时仪器报警红细胞冷凝集？混浊/HGB干扰？因此我们对标本进行了检查。</span></p><p><br /></p><p><p><img src="image/20200927/7d361db504c58f9f0a87aff681ec82bf_2.jpg" /></p></p><p><br /></p><p><span>可以看到，在静置15min后的样本，细胞聚集成一团，混匀后有明显的附壁沙洋感，基本可以肯定是冷凝集样本，推片镜检如下图：</span></p><p><br /></p><p><p><img src="image/20200927/03f7fa81e6bae63adeda9825b363c80c_3.jpg" /></p></p><p><br /></p><p><span>之后37℃孵育30min混匀后上机检测，结果并没有改观，</span><strong><span>因此孵育后将该样本一分为二，同时采用血浆置换及BC6800Plus预稀释两种检测方案进行了检测，结果如下：</span></strong></p><p><br /></p><p><strong><span>血浆置换：</span></strong></p><p><p><img src="image/20200927/0c856d782734d62403c2fb3132530999_4.jpg" /></p></p><p><p><img src="image/20200927/7774d4b551b80589350a9c8f719be717_5.png" /></p></p><p><br /></p><p><span>第一次血浆置换37℃孵育30min混匀后，加做了网织红。WBC: 2.04×10</span><sup>9</sup><span>/L RBC: 0.51×10</span><sup>12</sup><span>/L</span><sup> <span> </span></sup><span>HGB: 103 g/L MCH:205.7 pg MCHC:1565 g/L。白细胞结果有所上升，而红系结果变化并不明显。研究参数RBC-0为RET通道中的RBC计数，因该通道在对网织红进行染色计数过程中需要进行加热，因此在冷凝集样本检测中RBC-O具有一定的参考价值。可以看到RBC-O: 3.27×10</span><sup>12</sup><span>/L与电阻抗通道中的RBC: 0.51×10</span><sup>12</sup><span>/L相差比较明显，同时仪器仍报警红细胞冷凝集？、混浊/HGB干扰？,因此冷凝集在第一次血浆置换后并没有成功，紧接着进行了二次置换，结果如下：</span></p><p><br /></p><p><p><img src="image/20200927/337dce66896e5312ba32cee51c11e0ac_6.jpg" /></p></p><p><br /></p><p><span>二次置换后，37℃孵育45min混匀后手动开盖模式检测，WBC: 2.64×10</span><sup>9</sup><span>/L RBC: 1.31×10</span><sup>12</sup><span>/L</span><sup> <span> </span></sup><span>HGB: 115 g/L MCH:87.8pg MCHC:703 g/L,其中RBC: 1.31×10</span><sup>12</sup><span>/L与RBC-O: 3.27×10</span><sup>12</sup><span>/L仍存在较大差距，MCHC>380 g/L且红细胞冷凝集？、混浊/HGB干扰？报警仍然存在，因此二次置换也并未完全成功。为了避免不造成溶血，不再进行置换。因此对于严重的冷凝集样本，需要多次置换，这个过程中势必会引入过多的人为干扰因素。</span></p><p><br /></p><p><strong><span>预稀释：</span></strong></p><p><p><img src="image/20200927/a1cf313c46d1387ef07ff9878d1227b8_7.jpg" /></p></p><p><br /></p><p><span>将该患者样本在37℃孵育30min后，在孵育箱内混匀样本，使用加样枪吸取40uL加入到由BC6800Plus自动精准打液的140uL稀释液中，并将稀释后的血液在孵育箱中混匀孵育1-2min，使用该仪器的预稀释模式进行检测。WBC: 3.14×10</span><sup>9</sup><span>/L RBC:3.29×10</span><sup>12</sup><span>/L</span><sup> <span> </span></sup><span>HGB: 107 g/L MCH:32.6pg MCHC:331 g/L,可以看到RBC: 3.29×10</span><sup>12</sup><span>/L与RBC-O: 3.27×10</span><sup>12</sup><span>/L结果相近，同时红细胞冷凝集？、混浊/HGB干扰？报警消失，以此证明此冷凝集样本在预稀释模式下得到了解决。</span></p><p><br /></p><p><strong><span>小结：对于该患者的严重冷凝集，MCHC达到了5050 g/L，经过两次血浆置换并没有得到很好的解决，而通过多次离心置换还会带来溶血等风险。然而应用BC6800Plus的预稀释模式进行检测，能够更方便快捷的解决。该病例中WBC由未做处理时的1.75×10</span><sup>9</sup><span>/L到最后的WBC: 3.14×10</span><sup>9</sup><span>/L应是由于该冷凝集过于严重，导致吸取的样本不均引起的，因此对于严重冷凝集，还要关注WBC的计数。</span></strong></p><p><br /></p>
|
|
发表于 2020-9-27 07:14:47